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ELISA定量方法學(xué)開發(fā)實際案例分析
日期:2025-01-11 16:46
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摘要:ELISA定量方法學(xué)開發(fā)實際案例分析樣品進(jìn)行低中高稀釋,用來檢測樣品相對于對照品的平行性,即樣品和對照品在相同的ELISA體系中是否具備相同的**學(xué)特性。
如果低中高樣品的信號值在標(biāo)準(zhǔn)曲線合理的定量范圍內(nèi)
ELISA定量方法學(xué)開發(fā)實際案例分析
布局說明
增加了未包被(灰色)的分組,此分組是很有必要的,目的是為了確認(rèn)待檢測的樣品或者對照品物質(zhì)對酶標(biāo)板材的非特異吸附。
樣品進(jìn)行低中高稀釋,用來檢測樣品相對于對照品的平行性,即樣品和對照品在相同的ELISA體系中是否具備相同的**學(xué)特性。
如果低中高樣品的信號值在標(biāo)準(zhǔn)曲線合理的定量范圍內(nèi),低中高樣品經(jīng)稀釋倍數(shù)校正后的三組濃度值接近,說明樣品和對照品平行性較好,平行性較差則該樣品的檢測不能用該對照品作為標(biāo)準(zhǔn)曲線。
ELISA定量方法學(xué)開發(fā)實際案例分析一般操作流程
01酶標(biāo)板的制備:取濃度為100 ug/ml抗體,室溫溶解,混勻用包被液按如下步驟稀釋至5ug/ml,按加樣布局表加入100ml/孔,分別加入酶標(biāo)板條中 (Note 1),其中加入包被液做包被抗體的空白對照,2-8℃過夜。
02用洗滌液洗板3次,拍干,加入300ml/孔封閉液(Note 2)室溫封閉1小時;洗滌液洗板3次,拍干待用;
03抗體對照品的梯度稀釋和樣品的高中低稀釋(Note 3),100ul/孔加入微孔板中標(biāo)準(zhǔn)品稀釋。
04放入奧豪斯微孔板振蕩器內(nèi),設(shè)置37℃、600rpm振蕩1小時;
05用洗滌液洗板3次,拍干;
06酶聯(lián)抗體稀釋到合適的濃度(Note 4),在奧豪斯漩渦混合器上混勻,100ul/孔。
07放入微孔板振蕩器內(nèi),設(shè)置37℃、600rpm振蕩1小時;
08用洗滌液洗板4次,拍干;
09取酶聯(lián)抗體對應(yīng)的顯色液,臨用前20分鐘拿出平衡到室溫,在漩渦混合器上混勻;
10使用8道排槍以100 ml/孔加入顯色液;
11顯色液室溫避光放置10-30分鐘(Note 5)
12使用8道排槍以100ml/孔加入終止液終止反應(yīng);(根據(jù)底物的不同,此步可能不需要)
13用酶標(biāo)儀測定信號值;(Note 6)
14結(jié)果分析(Note 7)
貼心的Note說明-經(jīng)驗總結(jié)
Note1:在包被過程中如果需要減少整個ELISA體系試劑對酶標(biāo)板材的非特異吸附,建議選擇疏水性酶標(biāo)板材(polysorp),包被的抗體濃度要足量2-5ug/ul。
Note2:封閉液不一定能起到封閉效果,需要實驗驗證(未包被抗原的分組),一般來講分子量越小的封閉劑效果越佳。
Note3:在方法學(xué)開發(fā)的初期可以拉大一下標(biāo)準(zhǔn)曲線的濃度范圍1000ng/ml-0.1ng/ml。
Note4:酶聯(lián)抗體的稀釋需要做不同的稀釋度進(jìn)行比較選擇,對于單抗成分的酶聯(lián)抗體如果高低兩個稀釋度的酶聯(lián)抗體能夠產(chǎn)生一樣的劑量曲線,說明酶聯(lián)抗體過量,ELISA的信號傳遞未產(chǎn)生偏差。對于多抗成分的酶聯(lián)抗體,其稀釋度的判斷較為復(fù)雜,可以根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線的*高濃度時的回測來判斷酶聯(lián)抗體濃度是否合適,如果對照品較高濃度的兩個點信號值接近,說明多抗酶聯(lián)抗體的濃度過低。
Note 5:對于吸光度值底物和熒光底物,儀器檢測的信號值和顯色時間成正比,控制在10-30分鐘為宜。需要提前確認(rèn)檢測儀器的信號線性范圍,比如一般的酶標(biāo)儀吸光度值的信號線性范圍在0-3,吸光度值在3-4之間為非線性的,在顯色時應(yīng)控制信號值不要超過3,或者將信號值大于3的點不列入標(biāo)準(zhǔn)曲線的擬合。
Note 6:不同底物需要用不同的儀器進(jìn)行檢測,吸光度讀值,熒光讀值,化學(xué)發(fā)光讀值。在底物選擇過程中注意實驗室的酶標(biāo)儀是否具備該種類型的讀數(shù)功能。
Note 7:標(biāo)準(zhǔn)曲線的劑量曲線擬合可以是線性的,對數(shù)線性或者四參數(shù)擬合,檢驗標(biāo)準(zhǔn)是標(biāo)準(zhǔn)曲線各濃度點的回測偏差小于20%,如果不符合,刪除*高濃度點,直至符合標(biāo)準(zhǔn)。
ELISA定量方法學(xué)開發(fā)實際案例分析總結(jié)
儀器的檢測信號的線性范圍是有限的,如TMB顯色液的信號的線性范圍在0-3,ELISA方法開發(fā)和優(yōu)化過程更多時候是對于對照品的信號值的控制和調(diào)整,以使得信號值在線性范圍內(nèi)。
使用增強型的TMB顯色,延長顯色時間,增加標(biāo)準(zhǔn)曲線的*高濃度點,增加酶聯(lián)抗體的濃度等增強信號值,反之能夠降低信號值。
在信號值的線性范圍有限的情況下,盡可能的消除非特異吸附的信號值是方法靈敏的關(guān)鍵之一,選用疏水性酶標(biāo)板材,采用分子量更小的封閉劑,采用相對簡單單抗酶聯(lián)抗體或者鏈霉親和素酶聯(lián)抗體等都是有效消除非特異吸附信號的形式。
在ELISA方法學(xué)開發(fā)過程中多樣化的試劑耗材的合理選擇和搭配是一個穩(wěn)定,靈敏的ELISA方法的關(guān)鍵,而多樣化試劑材料的特性的了解是選擇的關(guān)鍵,這個需要在對比實驗中根據(jù)信號的變化系統(tǒng)的去了解和剖析。
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布局說明
增加了未包被(灰色)的分組,此分組是很有必要的,目的是為了確認(rèn)待檢測的樣品或者對照品物質(zhì)對酶標(biāo)板材的非特異吸附。
樣品進(jìn)行低中高稀釋,用來檢測樣品相對于對照品的平行性,即樣品和對照品在相同的ELISA體系中是否具備相同的**學(xué)特性。
如果低中高樣品的信號值在標(biāo)準(zhǔn)曲線合理的定量范圍內(nèi),低中高樣品經(jīng)稀釋倍數(shù)校正后的三組濃度值接近,說明樣品和對照品平行性較好,平行性較差則該樣品的檢測不能用該對照品作為標(biāo)準(zhǔn)曲線。
ELISA定量方法學(xué)開發(fā)實際案例分析一般操作流程
01酶標(biāo)板的制備:取濃度為100 ug/ml抗體,室溫溶解,混勻用包被液按如下步驟稀釋至5ug/ml,按加樣布局表加入100ml/孔,分別加入酶標(biāo)板條中 (Note 1),其中加入包被液做包被抗體的空白對照,2-8℃過夜。
02用洗滌液洗板3次,拍干,加入300ml/孔封閉液(Note 2)室溫封閉1小時;洗滌液洗板3次,拍干待用;
03抗體對照品的梯度稀釋和樣品的高中低稀釋(Note 3),100ul/孔加入微孔板中標(biāo)準(zhǔn)品稀釋。
04放入奧豪斯微孔板振蕩器內(nèi),設(shè)置37℃、600rpm振蕩1小時;
05用洗滌液洗板3次,拍干;
06酶聯(lián)抗體稀釋到合適的濃度(Note 4),在奧豪斯漩渦混合器上混勻,100ul/孔。
07放入微孔板振蕩器內(nèi),設(shè)置37℃、600rpm振蕩1小時;
08用洗滌液洗板4次,拍干;
09取酶聯(lián)抗體對應(yīng)的顯色液,臨用前20分鐘拿出平衡到室溫,在漩渦混合器上混勻;
10使用8道排槍以100 ml/孔加入顯色液;
11顯色液室溫避光放置10-30分鐘(Note 5)
12使用8道排槍以100ml/孔加入終止液終止反應(yīng);(根據(jù)底物的不同,此步可能不需要)
13用酶標(biāo)儀測定信號值;(Note 6)
14結(jié)果分析(Note 7)
貼心的Note說明-經(jīng)驗總結(jié)
Note1:在包被過程中如果需要減少整個ELISA體系試劑對酶標(biāo)板材的非特異吸附,建議選擇疏水性酶標(biāo)板材(polysorp),包被的抗體濃度要足量2-5ug/ul。
Note2:封閉液不一定能起到封閉效果,需要實驗驗證(未包被抗原的分組),一般來講分子量越小的封閉劑效果越佳。
Note3:在方法學(xué)開發(fā)的初期可以拉大一下標(biāo)準(zhǔn)曲線的濃度范圍1000ng/ml-0.1ng/ml。
Note4:酶聯(lián)抗體的稀釋需要做不同的稀釋度進(jìn)行比較選擇,對于單抗成分的酶聯(lián)抗體如果高低兩個稀釋度的酶聯(lián)抗體能夠產(chǎn)生一樣的劑量曲線,說明酶聯(lián)抗體過量,ELISA的信號傳遞未產(chǎn)生偏差。對于多抗成分的酶聯(lián)抗體,其稀釋度的判斷較為復(fù)雜,可以根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線的*高濃度時的回測來判斷酶聯(lián)抗體濃度是否合適,如果對照品較高濃度的兩個點信號值接近,說明多抗酶聯(lián)抗體的濃度過低。
Note 5:對于吸光度值底物和熒光底物,儀器檢測的信號值和顯色時間成正比,控制在10-30分鐘為宜。需要提前確認(rèn)檢測儀器的信號線性范圍,比如一般的酶標(biāo)儀吸光度值的信號線性范圍在0-3,吸光度值在3-4之間為非線性的,在顯色時應(yīng)控制信號值不要超過3,或者將信號值大于3的點不列入標(biāo)準(zhǔn)曲線的擬合。
Note 6:不同底物需要用不同的儀器進(jìn)行檢測,吸光度讀值,熒光讀值,化學(xué)發(fā)光讀值。在底物選擇過程中注意實驗室的酶標(biāo)儀是否具備該種類型的讀數(shù)功能。
Note 7:標(biāo)準(zhǔn)曲線的劑量曲線擬合可以是線性的,對數(shù)線性或者四參數(shù)擬合,檢驗標(biāo)準(zhǔn)是標(biāo)準(zhǔn)曲線各濃度點的回測偏差小于20%,如果不符合,刪除*高濃度點,直至符合標(biāo)準(zhǔn)。
ELISA定量方法學(xué)開發(fā)實際案例分析總結(jié)
儀器的檢測信號的線性范圍是有限的,如TMB顯色液的信號的線性范圍在0-3,ELISA方法開發(fā)和優(yōu)化過程更多時候是對于對照品的信號值的控制和調(diào)整,以使得信號值在線性范圍內(nèi)。
使用增強型的TMB顯色,延長顯色時間,增加標(biāo)準(zhǔn)曲線的*高濃度點,增加酶聯(lián)抗體的濃度等增強信號值,反之能夠降低信號值。
在信號值的線性范圍有限的情況下,盡可能的消除非特異吸附的信號值是方法靈敏的關(guān)鍵之一,選用疏水性酶標(biāo)板材,采用分子量更小的封閉劑,采用相對簡單單抗酶聯(lián)抗體或者鏈霉親和素酶聯(lián)抗體等都是有效消除非特異吸附信號的形式。
在ELISA方法學(xué)開發(fā)過程中多樣化的試劑耗材的合理選擇和搭配是一個穩(wěn)定,靈敏的ELISA方法的關(guān)鍵,而多樣化試劑材料的特性的了解是選擇的關(guān)鍵,這個需要在對比實驗中根據(jù)信號的變化系統(tǒng)的去了解和剖析。
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